Cómo calcular volumen, elegir el diluyente correcto y conservar la integridad del liofilizado al reconstituir péptidos de grado investigación.
La reconstitución es el paso donde más se pierde material en el banco de trabajo. Un cálculo mal hecho o un chorro de diluyente directo sobre el pellet puede degradar el péptido antes del primer ensayo.
Qué necesitas antes de empezar
- Vial liofilizado a temperatura ambiente (20–30 minutos fuera del refrigerador).
- Agua bacteriostática (alcohol bencílico 0.9%) o agua estéril para investigación.
- Jeringa graduada y toallitas con alcohol isopropílico.
Cómo calcular la concentración
La fórmula es directa: concentración = miligramos en el vial ÷ mililitros de diluyente.
| Contenido del vial | Diluyente | Concentración |
|---|---|---|
| 5 mg | 2 mL | 2.5 mg/mL |
| 10 mg | 2 mL | 5 mg/mL |
| 10 mg | 1 mL | 10 mg/mL |
Procedimiento recomendado
- Desinfecta el septo de ambos vials.
- Inyecta el diluyente lentamente contra la pared interna del vial, nunca sobre el pellet.
- Deja que el polvo se disuelva solo. No agites: rota suavemente si queda material visible.
- Etiqueta con fecha, concentración y número de lote.
Un péptido reconstituido es una solución perecedera: refrigéralo a 2–8 °C, protégelo de la luz y respeta la ventana de estabilidad del compuesto.
Errores frecuentes
- Usar agua no bacteriostática para soluciones que se conservarán más de 24 horas.
- Congelar y descongelar repetidamente la misma solución.
- Omitir el registro de lote, lo que rompe la trazabilidad frente al Certificado de Análisis.
Todo el material descrito aquí es para uso exclusivo de investigación de laboratorio in vitro.
Preguntas frecuentes
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